Aconitasa

De Wikipedia, la enciclopedia libre
Aconitasa 1, soluble
Estructuras disponibles
PDB

Buscar ortólogos: PDBe, RCSB

 Estructuras enzimáticas
RCSB PDB, PDBe, PDBsum
Identificadores
Nomenclatura
 Otros nombres
c-Aconitasa; aconitasa citosólica
Símbolos ACO1 (HGNC: 117) IREB1, cAcn, cAc
Identificadores
externos
 Bases de datos de enzimas
IntEnz: entrada en IntEnz
BRENDA: entrada en BRENDA
ExPASy: NiceZime view
KEGG: entrada en KEEG
PRIAM: perfil PRIAM
ExplorEnz: entrada en ExplorEnz
MetaCyc: vía metabólica
Número EC 4.2.1.3
Locus Cr. 9 p21.1
Estructura/Función proteica
Tamaño 889 (aminoácidos)
Peso molecular 98.399 (Da)
Ortólogos
Especies
Humano Ratón
Entrez
48
UniProt
P21399 n/a
RefSeq
(ARNm)
NM_002197 n/a
PubMed (Búsqueda)
[1]


PMC (Búsqueda)
[2]
[editar datos en Wikidata]
Aconitasa 2, mitocondrial
Estructuras disponibles
PDB

Buscar ortólogos: PDBe, RCSB

 Estructuras enzimáticas
RCSB PDB, PDBe, PDBsum
Identificadores
Nomenclatura
 Otros nombres
m-aconitasa
Símbolos ACO2 (HGNC: 118) mAcn, mAc
Identificadores
externos
 Bases de datos de enzimas
IntEnz: entrada en IntEnz
BRENDA: entrada en BRENDA
ExPASy: NiceZime view
KEGG: entrada en KEEG
PRIAM: perfil PRIAM
ExplorEnz: entrada en ExplorEnz
MetaCyc: vía metabólica
Número EC 4.2.1.3
Locus Cr. 22 q13.2
Estructura/Función proteica
Tamaño 780 (aminoácidos)
Peso molecular 85.425 (Da)
Ortólogos
Especies
Humano Ratón
Entrez
50
UniProt
Q99798 n/a
RefSeq
(ARNm)
NM_001098 n/a
PubMed (Búsqueda)
[3]


PMC (Búsqueda)
[4]
[editar datos en Wikidata]

La aconitasa (ACO) o aconitato hidratasa (EC 4.2.1.3) es una enzima que cataliza la isomerización estereoespecífica de citrato a isocitrato a través de cis-aconitato en el ciclo de Krebs.[1]​ En los humanos, encontramos la aconitasa citosólica (ACO1) y la aconitasa mitocondrial (ACO2); estas dos proteínas son isoenzimas.[2]​ Ambas variantes son proteínas multifunción (en inglés, "moonlightning proteins"), es decir, proteínas formadas por una única cadena polipeptídica que tienen más de una función.[3]​

Biosíntesis[editar]

El gen humano de la Aconitasa 1 se encuentra en el cromosoma 9, tiene una longitud de entre 66.217 y 70.150 pares de bases y la región codificante es de 44.605 pares de bases, un total de 20 exones.[4]​[5]​[6]​[7]​ El mRna correspondiente tiene una longitud cercana a las 3.500 bases y mediante el proceso de traducción y las modificaciones postraduccionales se obtiene una proteína de 889 aminoácidos.[8]​[9]​

En el caso de la Aconitasa 2 humana, el gen correspondiente se encuentra en el cromosoma 22 y se extiende aproximadamente sobre 59.860 pares de bases y 18 exones y la región codificante es de 59.467 pares de bases, un total de 18 exones.[10]​[11]​[12]​ La proteína resultante está formada por 753 aminoácidos.[13]​

Estructura[editar]

La aconitasa es una enzima que pertenece a las proteínas ferrosulfuradas. La estructura secundaria está constituida por hélices alfa alternadas con láminas beta y, por lo que a la estructura terciaria refiere, la aconitasa es una proteína globular.[14]​ No dispone de estructura cuaternaria ya que solo tiene una subunidad.

Su estructura está dividida en 4 dominios globulares presentados con el siguiente orden: 4, 1, 2 y 3. Entre los dominios 3 y 4 hay un linker joining (estructura proteica) que varía dependiendo de la conformación funcional. En la aconitasa citosólica es más largo y estructurado (593 a 654) que en la mitocondrial (513 a 536). El sitio activo está formado por 21 aminoácidos de los cuatro dominios.[14]​[15]​ Las cadenas laterales son polares y forman enlaces de hidrógeno con el sustrato, lo que contribuye al gran tamaño de la proteína. Los dominios del 1 al 3 están muy compactados, a diferencia del cuarto que es mucho más flexible. Existe un plegamiento que difiere en ambos tipos en el dominio 1 para la región N-terminal, residuos del 1 al 33. Las inserciones en diferentes dominios provoca que las estructuras tridimensionales de las dos isoenzimas (citosólica y metabólica) sean distintas.

Cuando la proteína cataliza la isomerización del citrato a D-isocitrato, si está inactiva, contiene un grupo [3Fe-4S] en el sitio activo, mientras que, para que la aconitasa esté activa y realice esta función, se debe ligar un átomo más de hierro, creando un grupo [4Fe-4S]2+.[16]​ En cambio, cuando la proteína desempeña funciones relacionadas con el ARN mensajero, no presenta ninguno de los dos grupos mencionados. La pérdida del grupo formado por átomos de hierro y azufre provoca un cambio en la conformación, resultando en un sitio activo con una mayor abertura, permitiéndole así tener un sustrato diferente.[2]​[15]​[17]​

Clasificación[editar]

Aconitasa citosólica[editar]

La cAcn interconvierte el citrato e 2 en el citoplasma, lo cual permite equilibrar la cantidad de NADPH obtenido por la deshidratación de isocitrato y la cantidad de acetil-coA generado a partir de citrato. Estos dos productos son necesarios para la síntesis de ácidos grasos y numerosos procesos metabólicos, como la glucólisis o la gluconeogénesis.

A su vez, la actividad enzimática del cAcn parece contribuir en la defensa celular contra el estrés oxidativo al proporcionar una fuente de isocitrato para la producción de NADPH. Glutatión reductasa utiliza el NADPH para regenerar glutatión tras ser oxidada por glutatión peroxidasa, lo cual permite retirar el peróxido creado por el estrés oxidativo.[15]​

Contiene un clúster de hierro-azufre [4Fe-4S] con el que la aconitasa adopta una conformación cerrada alrededor del centro activo que le permite enlazarse con el citrato y catalizar la conversión a isocitrato. Sin embargo, la aconitasa solo tiene actividad catalítica cuando las concentraciones de hierro son altas (en niveles normales). Si las concentraciones de hierro bajan demasiado, entonces la cAcn pierde el [4Fe-4S] -clúster y su actividad enzimática, y asume un nuevo papel en la regulación de los niveles de hierro dentro de la célula.[15]​ De este modo, se obtiene la proteína IRP-1, con la capacidad de unirse a secuencias específicas no codificantes del mRNA, relacionada con la captación, el almacenamiento y la utilización de hierro, y conocidas como elementos de respuesta de hierro (Iron-responsive element (IRE)). Una vez vinculado a estas secuencias, el IRP-1 ejerce una regulación postranscripcional, ya sea promoviendo o impidiendo su traducción. Estos sitios de unión generalmente coinciden con los sitios de unión al clúster de hierro y azufre.La fuerte interacción asegura la homeostasis de hierro en células mamíferas ante una escasez de hierro.

La cAc en mamíferos ha desarrollado una función secundaria como inhibidor de esos mRNA que transportan elementos de respuesta o reguladores de hierro (IRE).

Otra proteína reguladora del hierro, el IRP2, carece de actividad enzimática como aconitasa, pero es el principal regulador metabólico del hierro, uniéndose a los mismos ARNm que el IRP-1. Por el contrario, el IRP1 actúa predominantemente como aconitasa, cambiando a IRP1 en niveles altos de oxígeno, posiblemente en condiciones de infección o inflamación, donde la producción de especies reactivas de oxígeno y óxido nítrico podría desestabilizar el cúmulo del clúster hierro-azufre.

Aconitasa mitocondrial[editar]

Ilustración de aconitasa mitocondrial ACO2 (cerdo) con isocitrato como complejo y FeS4 como grupo, ambos ilustrado en esferas. Estructura secundaria coloreada por dominio.

La mAcn juega un papel fundamental en el metabolismo de los carbohidratos, pues cataliza el segundo paso del ciclo de Krebs para producir isocitrato a partir de citrato. También cumple una función estructural y reguladora en el mantenimiento del ADN mitocondrial (mtDNA):[18]​ actúa en la estabilización del mtDNA, formando parte de los complejos proteicos de este, conocidos como nucloides. El mtDNA modela los nucloides para influir directamente en la expresión genética mitocondrial ante cambios en el entorno celular.

Estas dos funciones están vinculadas. La función en el ciclo de Krebs es proporcionar electrones de alta energía en forma de NADH y FADH2 a la vía de fosforilación oxidativa mitocondrial, mientras que el mtDNA codifica componentes de la vía de fosforilación oxidativa. Como tal, mAcn podría actuar como un regulador metabólico para acoplar el metabolismo energético con la expresión del gen mitocondrial.

Es una proteína muy conservada y presenta una gran homología entre mamíferos. Además es susceptible a la acetilación no enzimática por metabolitos como el acetil-CoA, por lo que funcionaría como sensor de la disponibilidad de nutrientes.

A pesar de presentar numerosas similitudes estructurales con la aconitasa citosólica, los dominios poseen una configuración diferente. En el dominio 1, se observa un plegamiento diferente para la región N-terminal (residuos del 1 al 33) al comparar las dos proteínas y, a su vez,el linker joining en la aconitasa citosólica (593 a 654) es más largo que en la mitocondrial (513 a 536), y además se encuentra más estructurado. Además, cuando se compara con la aconitasa mitocondrial, en la aconitasa citosólica aparecen inserciones en diferentes dominios: tres en el dominio 1, dos en el dominio 3 y una en el dominio 4 otra más es. Por lo tanto, las estructuras tridimensionales de estas dos isoenzimas son significativamente distintas.[19]​

Aconitasa bacteriana[editar]

Al igual que la mAcn, la aconitasa bacteria (AcnB) es una enzima principal en el ciclo de Krebs que posee una función secundaria. En la bacteria Escherichia coli, se demostró que la AcnB es un regulador de la expresión genética. En Salmonella enterica, la AcnB inicia un proceso regulador para controlar la biosíntesis de flagelos mediante una interacción del ftsH transcript, un factor sigma alternativo de la RNA polimerasa.

Esta unión disminuye la concentración intracelular de ftsH proteasa y, consecuentemente, aumenta la cantidad del factor sigma 32 de la RNA polimerasa, el cual en la mayoría de los casos es degradado por la ftsH proteasa. Dicho factor aumenta la síntesis del chaperón Dnak, lo cual fomenta la síntesis de la proteína flagelar FliC.

Asimismo regula la síntesis de otras proteínas , como el superóxido dismutasa (SodA) y otras enzimas involucradas en el estrés oxidativo. Tiene una estructura de dominio diferente a la de cAcn o mAcn, y difiere de otras aconitasas al contener un dominio similar a HEAT. Se cree que los dominios de tipo HEAT están involucrados en las interacciones proteína-proteína. La región N-terminal, que contiene tanto el dominio tipo HEAT como el dominio "giratorio", son responsables de la dimerización y la unión de AcnB al ARNm.

Un mecanismo de dimerización mediado por hierro puede ser responsable de cambiar AcnB entre sus funciones catalíticas y reguladoras, ya que la dimerización requiere hierro, mientras que la unión del ARNm es inhibida por el hierro.

Escherichia coli también posee aconitasa A (AcnA), que es una enzima inducida por el estrés sintetizada durante la fase estacionaria de crecimiento. La AcnA es similar en la conformación de dominios a la mAcn eucariota.

Función[editar]

Centro activo de la enzima[editar]

Ilustración del centro activo de aconitasa (PDB 7ACN) con isocitrato como ligando (las interacciones con los puentes de hidrógeno se marcan en línea de puntos).

Al contrario que la mayoría de las proteínas hierro-azufre, que funcionan como transportadores de electrones, el centro hierro-azufre de la aconitasa reacciona directamente con el sustrato de una enzima. La aconitasa tiene un centro activo [Fe4S4]2+, que puede convertirse a una forma inactiva [Fe3S4]+. Estabiliza el sustrato por medio de interacciones electroestáticas, colocándolo en la posición correcta para interactuar con los residuos catalíticos, y se garantiza el anclaje del sustrato a la enzima por la presencia de aminoácidos como la serina (Ser), arginina (Arg), histidina (His) o ácido aspártico (Asp). Se ha demostrado que tres residuos de cisteína (Cys) son ligandos del centro [Fe4S4]: Cys437, Cys503 y Cys506. Por tanto, en el centro activo del enzima existen aminoácidos responsables de la unión y el anclaje del sustrato al enzima, a lo que también contribuye el centro ferro-sulfurado, y, por otro lado, tenemos aminoácidos encargados de llevar a cabo la catálisis propiamente dicha. La conformación cerrada que adopta la aconitasa con el clúster de [Fe4S4] lo que ocasiona es una restricción de accesibilidad a este clúster. Se cree que el acceso a este centro activo es a través de un movimiento del dominio 4 de la proteína con respecto al resto de dominios (tal y como ocurre en la aconitasa mitocondrial).

Los residuos que forman el centro activo son conservados entre especies de animales, plantas, bacterias y levaduras. En las bacterias, la aconitasa se une al ARN viral, estabilizándolo y promoviendo la traducción de proteínas virales, mientras que en las levaduras es importante para el mantenimiento y asociación del ADN mitocondrial mediante la formación de nucleoides.

La Ser642 es capaz de aceptar el protón que cede el sustrato actuando como base, gracias al entorno químico en que se encuentra. Por otro lado, la His101actúa como un ácido, donando su protón para la reacción. En estado activo, los lábiles iones de hierro del centro [Fe4S4] no están coordinados por Cys, sino por moléculas de agua.

Son homólogos de la aconitasa la proteína que une el elemento regulador de hierro (IRE-BP) y la 3-isopropilmalato deshidratasa (α-isopropilmalato isomerasa, una enzima que cataliza el segundo paso de la biosíntesis de leucina). Los elementos de respuesta o reguladores de hierro (IRES) constituyen una familia de secuencias de 28 nucleótidos, no codificantes, que forman estructuras de tallo y bucle que regulan el almacenamiento de hierro, la síntesis de hemo y la absorción de hierro.

La aconitasa es inhibida competitivamente por fluoracetato, razón por la que este es venenoso. Así pues, el fluoracetato en forma de fluoracetil-CoA reacciona con el oxalacetato, por un proceso de condensación, y produce fluorcitrato, el cual la aconitasa no lo reconoce y se paraliza el ciclo. Este proceso inhibe la fosforilación oxidativa, porque no se forman equivalentes reducidos y, como consecuencia, la ATP-sintasa se inactiva, por lo que no se producirá ATP. El tiempo de latencia entre la acción tóxica y las manifestaciones clínicas es de entre media hora a dos horas. Posteriormente, se acumula el citrato al no poder ser utilizado como sustrato y produce una disminución del calcio. El centro hierro-azufre es muy sensible a la oxidación por superóxido. También es inhibida por el trans-Aconitato y es sensible al peroxinitrio y al radical carbonato.[20]​[21]​[22]​

Mecanismo de reacción en el Ciclo de Krebs[editar]

Esquema del Ciclo de Krebs (o ciclo del ácido cítrico), en el que se puede apreciar la función de la aconitasa mitocondrial (ACO2), que consiste en catalizar la isomerización de citrato a isocitrato a través de cis-aconitato.

La enzima hidratasa del ácido aconítico (aconitasa) tiene la función de catalizar la reacción de isomerización de citrato en su isómero constitucional (isocitrato) durante el Ciclo de Krebs. Esta reacción es unidireccional a causa de la ley de acción de masa, ya que las concentraciones son 91% de citrato, 3% de cis-aconitato y 6% de isocitrato, en condiciones estándar (pH=7,4 y 25 °C). La reacción tiene una energía libre de Gibbs estándar positiva (6,3kJ/mol), aunque el consumo acelerado de isocitrato, mantiene la energía libre casi en cero en condiciones intracelulares. La aconitasa produce una forma isomérica de las cuatro disponibles del citrato, el 2R,3S-isocitrato. El citrato tiene un grupo hidróxido que no es fácilmente oxidable, en cambio el isocitrato tiene un grupo hidróxido secundario que sí es fácilmente oxidable. El mecanismo de reacción se puede dividir en tres fases: una de deshidratación, una de rotación y otra de rehidratación.

Catalización de la isomerización de la aconitasa del citrato a isocitrato con su producto intermedio (cis-aconitato).

En la deshidratación (eliminación), el grupo OH unido al centro Fe-S es protonado y removido formando el cis-aconitato como producto intermedio. Estrictamente, se forma a partir de la His101 que cede un H+ que formará H2O con un OH- del carbono-3 del sustrato y de la Ser642 que recibirá un H+ del carbono-2 del sustrato, captándolo en su cadena lateral. Se forma un doble enlace entre el carbono 2 y el carbono 3 formando cis-aconitato como producto intermedio.

Para la rehidratación es necesario que la molécula rote 180 grados para cambiar su "modo", del modo citrato al modo isocitrato. Esto sucede mediante otra molécula de cis-aconitato, que desplaza la unida.[23]​

Finalmente, en la rehidratacicon (adición), el grupo hidroxilo se une al átomo de carbono adyacente, debido a que la His101 capta un H+ de la molécula de H2O, que se ha generado al iniciar la reacción, el OH- se vuelve a unir al sustrato en un lugar diferente, y la Ser642 devuelve al sustrato el H+, formando isocitrato. La isomerización reversible que realiza esta enzima por medio de reacciones de deshidratación e hidratación permite clasificarla en el grupo de las liasas.[21]​

Homeostasis del hierro y otras funciones[editar]

También participan regulando la traducción de ciertos ARNm. La proteína reguladora específica, el IRP1, se une a IREs en las regiones 5' y 3', pero solo cuando la aconitasa carece del grupo hierro-azufre. La expresión de IRP1 en los cultivos celulares ha revelado que la proteína funciona tanto como una aconitasa activa, cuando las células están repletas de hierro, o como una proteína activa de unión a ARN, cuando las células carecen de hierro.

Principalmente, esta proteína regula la traducción del ARNm del receptor de transferrina y, en menor medida, de la ferritina actuando de dos modos distintos: evitando la formación de los ribosomas alrededor del ARNm de la ferritina y evitando la degradación del ARNm del receptor de transferrina. De este modo, cuando hay niveles demasiado bajos de hierro, la proteína se une a estos ARNm, evitando su degradación, y permitiendo que una mayor cantidad de receptores de transferrina se sinteticen en los ribosomas, aumentando la concentración de hierro en el interior de la célula. Cuando las concentraciones de hierro aumentan, la unión de la IRP1 a los IREs del ARNm de la ferritina se debilita, permitiendo que la homeostasis del hierro se mantenga.[24]​

Las IRP1 mutantes, en donde todos, o alguno de los tres residuos de cisteína que participan en la formación de Fe-S, se sustituyen por serina, la aconitasa pierde su actividad, pero conserva sus propiedades de unión a ARN.[15]​

Otra función relevante se le atribuye a la enzima 3-isopropilmalato deshidratasa, perteneciente a la familia de la aconitasa que cataliza la segunda reacción de la biosíntesis del aminoácido esencial leucina, tratándose de una isomerización de 2-isopropilmalato a 3-isopropilmalato, a través de la deshidratación. Además, la actividad enzimática del cAcn parece contribuir en la defensa celular contra el estrés oxidativo al proporcionar una fuente de isocitrato para la producción de NADPH.[15]​

Moonlighting proteins: la estructura de la aconitasa y el IRP-1[editar]

La aconitasa, que cataliza la reacción de isomerización del citrato a isocitrato, y el IRP-1 (Iron Regulatory Protein-1), que regula el metabolismo del hierro uniéndose a distintos mRNA según las concentraciones de este metal,[25]​ provocando cambios en su almacenamiento y liberación, son dos proteínas que presentan la misma cadena polipeptídica. Por lo tanto, al ser dos formas prácticamente idénticas de la misma proteína y al participar en dos procesos metábolicos distintos, se denominan "moonlighting proteins".[3]​[26]​ No obstante, cabe destacar que la única que puede actuar como IRP-1 es la aconitasa citosólica, y no la mitocondrial.

Por lo que a la estructura se refiere, el IRP1 muestra una conformación 25 Å más abierta que la de la aconitasa citosólica (c-aconitasa). A su vez, la estructura cristalizada de la c-aconitasa se muestra más compacta,[15]​ donde los residuos implicados en la función de la proteína como IRP1 son inaccesibles. Por tanto, los accesos de la proteína son diferentes para cada conformación basándose en la unión de sus respectivos ligandos.[17]​ La proteína ejerce su función como aconitasa con la unión a un centro ferro-sulfurado [4Fe-4S]. Esta unión es principalmente lo que provoca las diferencias funcionales entre ambas proteínas, puesto que impide la unión del enzima al RNA, evitando así la función del IRP1.[2]​[15]​[27]​

En cuanto a los cambios conformacionales, los más importantes son los que afectan a los dominios 3 y 4 de la proteína.

El dominio 4 sufre una rotación de 32.º y una traslación de unos 14 Å. Esto elimina las interacciones entre los dominios 3 y 4, producidas en la aconitasa, y favorece la formación de nuevas interacciones en los dos sitios de unión al RNA presentes en el IRP1.

Asimismo, puesto que hay una interacción entre el dominio 4 y el dominio 1 por medio de uniones hidrofóbicas, los residuos 90 a 170 del dominio 1 se mueven junto con el dominio 4 durante estos cambios conformacionales. Por otro lado, el dominio 3 sufre una rotación de 52° y una traslación de aproximadamente 13 Å.

Un cambio conformacional en el linker joining entre los dominios 3 y 4 es fundamental para su reposicionamiento respecto al núcleo proteico formado por los dominios 1 y 2. En la c-aconitasa, los residuos 593 a 614 en esta zona comprenden dos hélices α (21 y 22) separadas por un residuo de prolina. En el caso de IRP1, se forma una única hélice α que implica también los residuos 593 a 614.[28]​

Enfermedades relacionadas[editar]

El déficit de aconitasa en el organismo, junto con una disminución de los niveles de succinato deshidrogenasa, en los músculos esqueléticos provoca una miopatía. Las alteraciones en la cantidad de aconitasa de los individuos pueden tener varios efectos según la actividad física realizada, como acidosis láctica, debilidad muscular o disnea, en casos moderados, o parálisis muscular, debido al aumento de piruvato y lactato, cuando el ejercicio es intenso. La miopatía provoca una baja tolerancia al ejercicio físico, lo que conduce a una disminución de la capacidad oxidativa, una extracción de oxígeno baja a nivel muscular y una circulación sanguínea hipercinética.

Recientemente, se han descubierto variantes de la aconitasa que provocan el síndrome de degeneración cerebelo-retinal infantil, caracterizado por varios síntomas neurológicos y musculares.

Actualmente, se realizan análisis moleculares para detallar la relación entre una disminución de aconitasa y el gen ISCU y biopsias de músculo esquelético para identificar un déficit de dicha proteína. De esta manera, se ha demostrado que el gen es importante en la actividad de las proteínas mitocondriales, como la aconitasa, por el ensamblaje del grupo 4Fe-4S. Existen otros genes relacionados con este grupo que afectan a la cadena respiratoria mitocondrial, por ejemplo el gen IBA57 o el gen LYRM4, las mutaciones de los cuales provocan un defecto en la biogénesis de los clústeres hierro-azufre.[29]​[30]​

El cáncer de próstata se relaciona también con la enzima aconitasa. Una disminución en la concentración de esta proteína causa disuria, dificultad para iniciar o detener el flujo de orina y goteo, dolor al eyacular y hematuria. Este tipo de cáncer y la hiperplasia benigna de próstata (HBP) también se han vinculado con la acumulación de zinc (Zn), ya que regula los niveles de citrato en este órgano. La alteración se produce cuando se eleva la cantidad de este elemento en las mitocondrias, lo que inhibe la actividad de la aconitasa mitocondrial. Este hecho detiene la oxidación de los citratos, anulando el ciclo de Krebs y reduciendo la producción de ATP.[31]​

El cuerpo humano debe mantener los niveles de aconitasa estrictamente regulados para evitar ciertas patologías. En ocasiones, es la propia enfermedad la que deteriora la actividad enzimática de la proteína. Ésta se inactiva o funciona inadecuadamente cuando el individuo presenta diabetes tipo I, ya que la aconitasa es muy vulnerable al estrés nitrosativo y oxidativo, causado por los radicales libres después de una hiperglucemia. De modo que el exceso de glucosa en sangre inactiva la enzima, por lo que se usa habitualmente como marcador de daño neurodegenerativo.[32]​

Referencias[editar]

  1. ↑ «Molecular biology of the cell, 3rd ed., by Alberts et al., Garland Publishing, New York, 1994, 1,294 pp + glossary & index, $59.95.». Molecular Reproduction and Development 38 (4): 459-459. 1994-08. ISSN 1040-452X. doi:10.1002/mrd.1080380418. Consultado el 23 de octubre de 2018. 
  2. ↑ a b c Victor A. McKusick (4 de junio de 1986). «OMIM Entry - * 100880 - ACONITASE 1, SOLUBLE; ACO1». www.omim.org (en inglés estadounidense). Consultado el 5 de octubre de 2018. 
  3. ↑ a b Jeffery, Constance J. (3 de febrero de 2009). «Moonlighting proteins—an update». Molecular BioSystems (en inglés) (Royal Society of Chemistry) 5 (4): 345. ISSN 1742-206X. doi:10.1039/b900658n. Consultado el 5 de octubre de 2018. 
  4. ↑ «Gene: ACO1 (ENSG00000122729) - Marked-up sequence - Homo sapiens - Ensembl genome browser 94». oct2018.archive.ensembl.org (en inglés británico). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  5. ↑ «Human Gene ACO1 (ENST00000309951.7) Description and Page Index». genome.ucsc.edu (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  6. ↑ «Human Gene ACO1 (ENST00000379923.5) Description and Page Index». genome.ucsc.edu (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  7. ↑ «Human Gene ACO1 (ENST00000541043.5) Description and Page Index». genome.ucsc.edu (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  8. ↑ «ACO1 - Cytoplasmic aconitate hydratase - Homo sapiens (Human) - ACO1 gene & protein». www.uniprot.org (en inglés). Consultado el 5 de octubre de 2018. 
  9. ↑ «GermOnline Gene Report for ENSG00000122729» (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  10. ↑ «Human Gene ACO2 (ENST00000216254.8) Description and Page Index». genome.ucsc.edu (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  11. ↑ «Human Gene ACO2 (ENST00000216254.8) Description and Page Index». genome.ucsc.edu (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  12. ↑ «Human Gene ACO2 (ENST00000396512.3) Description and Page Index». genome.ucsc.edu (en inglés). Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  13. ↑ «ACO2 - Aconitate hydratase, mitochondrial precursor - Homo sapiens (Human) - ACO2 gene & protein». www.uniprot.org (en inglés). Consultado el 5 de octubre de 2018. 
  14. ↑ a b Candice Kremer. «Aconitase». collab.its.virginia.edu (en inglés). Universidad de Virginia. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  15. ↑ a b c d e f g h Dupuy, Jérôme; Volbeda, Anne; Carpentier, Philippe; Darnault, Claudine; Moulis, Jean-Marc; Fontecilla-Camps, Juan Carlos (1 de enero de 2006). «Crystal Structure of Human Iron Regulatory Protein 1 as Cytosolic Aconitase». Structure (en inglés) (Elsevier) 14 (1): 129-139. ISSN 0969-2126. doi:10.1016/j.str.2005.09.009. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  16. ↑ Robbins, A. H.; Stout, C. D. (1989-5). «Structure of activated aconitase: formation of the [4Fe-4S] cluster in the crystal». Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America (en inglés) (National Academy of Sciences) 86 (10): 3639-3643. ISSN 0027-8424. PMC 287193. PMID 2726740. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  17. ↑ a b Walden, William E.; Selezneva, Anna I.; Dupuy, Jérôme; Volbeda, Anne; Fontecilla-Camps, Juan C.; Theil, Elizabeth C.; Volz, Karl (22 de diciembre de 2006). «Structure of dual function iron regulatory protein 1 complexed with ferritin IRE-RNA». Science (en inglés) (New York, N.Y.: American Association for the Advancement of Science) 314 (5807): 1903-1908. ISSN 1095-9203. PMID 17185597. doi:10.1126/science.1133116. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  18. ↑ Kurland, C. G.; Andersson, S. G. E. (diciembre de 2000). «Origin and Evolution of the Mitochondrial Proteome». Microbiology and Molecular Biology Reviews (en inglés) (American Society for Microbiology) 64 (4): 786-820. ISSN 1092-2172. doi:10.1128/mmbr.64.4.786-820.2000. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  19. ↑ Gruer, Megan J.; Artymiuk, Peter J.; Guest, John R. (1997-01). «The aconitase family: three structural variations on a common theme». Trends in Biochemical Sciences 22 (1): 3-6. ISSN 0968-0004. doi:10.1016/s0968-0004(96)10069-4. Consultado el 17 de octubre de 2018. 
  20. ↑ Gardner, Paul R. (2002). «Aconitase: sensitive target and measure of superoxide». Methods in Enzymology (en inglés) (Elsevier) 349: 9-23. ISSN 0076-6879. PMID 11912933. Consultado el 5 de agosto de 2009. 
  21. ↑ a b Muñoz Barroso, María Isabel; Hernández Hernández, Ángel (2017). «Aconitasa». proteinasestructurafuncion.usal.es. Departamento de bioquímica y biología molecular de la Universidad de Salamanca. Archivado desde el original el 8 de octubre de 2018. Consultado el 8 de octubre de 2018. 
  22. ↑ Marie Claire Berrouet Mejia, Isabel Eugenia Escobar Toledo, Diego Mauricio Gonzalez Ramirez (2004). «Fluoracetato de sodio: estado del arte». retel -revista de toxicología en línea-. Archivado desde el original el 14 de octubre de 2018. Consultado el 13 de octubre de 2018. 
  23. ↑ Gawron, Oscar; Glaid, Andrew J.; Fondy, Thomas P. (1961-09). «Stereochemistry of Krebs' Cycle Hydrations and Related Reactions». Journal of the American Chemical Society 83 (17): 3634-3640. ISSN 0002-7863. doi:10.1021/ja01478a021. Consultado el 23 de octubre de 2018. 
  24. ↑ Connell, Gregory J.; Danial, Jando S.; Haastruthers, Christian X. (12 de enero de 2018). «Evaluation of the iron regulatory protein-1 interactome». BioMetals (en inglés) (Springer Nature) 31 (1): 139-146. ISSN 0966-0844. doi:10.1007/s10534-018-0076-8. Consultado el 8 de octubre de 2018. 
  25. ↑ Haile, D. J.; Rouault, T. A.; Tang, C. K.; Chin, J.; Harford, J. B.; Klausner, R. D. (15 de agosto de 1992). «Reciprocal control of RNA-binding and aconitase activity in the regulation of the iron-responsive element binding protein: role of the iron-sulfur cluster.». Proceedings of the National Academy of Sciences 89 (16): 7536-7540. ISSN 0027-8424. doi:10.1073/pnas.89.16.7536. Consultado el 23 de octubre de 2018. 
  26. ↑ Goodsell, David (mayo de 2017). «Aconitase and Iron Regulatory Protein 1». RCSB Protein Data Bank (en inglés). ISSN 1234-432X. doi:10.2210/rcsb_pdb/mom_2007_5. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  27. ↑ Volz, Karl (febrero de 2008). «The functional duality of iron regulatory protein 1». Current Opinion in Structural Biology (en inglés) (Elsevier) 18 (1): 106-111. ISSN 0959-440X. doi:10.1016/j.sbi.2007.12.010. Consultado el 6 de octubre de 2018. 
  28. ↑ Gruer, Megan J.; Artymiuk, Peter J.; Guest, John R. (1 de enero de 1997). «The aconitase family: three structural variations on a common theme». Trends in Biochemical Sciences (en inglés) (Elsevier) 22 (1): 3-6. ISSN 0968-0004. doi:10.1016/s0968-0004(96)10069-4. Consultado el 8 de octubre de 2018. 
  29. ↑ «OMIM Entry - # 255125 - MYOPATHY WITH LACTIC ACIDOSIS, HEREDITARY; HML». omim.org (en inglés estadounidense). 21 de noviembre de 1991. Consultado el 9 de octubre de 2018. 
  30. ↑ Mochel, Fanny; Haller, Ronald G. (31 de marzo de 2009). Adam, Margaret P., ed. GeneReviews: Myopathy with Deficiency of ISCU (en inglés estadounidense). Seattle: University of Washington. Consultado el 9 de octubre de 2018. 
  31. ↑ Ballesteros Sampol, J. J. Pérez-Castro Ellendt, E., ed. «Envejecimiento, dieta y cáncer de próstata». Archivos Españoles de Urología. Archivado desde el original el 8 de octubre de 2018. Consultado el 8 de octubre de 2018. 
  32. ↑ «El exceso de glucosa causa problemas de colesterol». NCYT. Amazings. 25 de marzo de 2014. Consultado el 9 de octubre de 2018. 

Lecturas adicionales[editar]

  • Beinert, H., Kennedy, M.C. and Stout, C.D. (1996). «Aconitase as iron-sulfur protein, enzyme, and iron-regulatory protein». Chem. Rev. 96: 2335-2373. doi:10.1021/cr950040z. 
  • Flint, D.H. and Allen, R.M. (1996). «Iron-sulfur proteins with nonredox functions». Chem. Rev. 96: 2315-2334. doi:10.1021/cr950041r. 
  • Frishman, D. and Hentze, M.W. (1996). «Conservation of aconitase residues revealed by multiple sequence analysis». Eur. J. Biochem. 239: 197-200. doi:10.1111/j.1432-1033.1996.0197u.x. 
  • Alberts, B., (2008). Molecular Biology of the Cell. 2nd ed. New York, NY [u.a.]: Garland Science Taylor & Francis.
  • M. Claire Kennedy und Helmut Beinert: . In: Ivano Bertini, Harry B. Gray, Edward I. Stiefel, Joan Selverstone Valentine (Hrsg.): . University Science Books, Herndon 2006, ISBN 1-891389-43-2, S. 209 ff
  • Donald Voet, Judith G. Voet: Biochemie. Wiley-VCH, Weinheim 1994, ISBN 3-527-29249-7.
  • Jeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer: Biochemie. 6 Aufl. Spektrum, Heidelberg 2007, ISBN 3-8274-1800-3.

Enlaces externos[editar]

Obtenido de «https://es.wikipedia.org/w/index.php?title=Aconitasa&oldid=157978814»